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1. WO2020108629 - POLYPEPTIDE RDP1, SON PROCÉDÉ DE FABRICATION ET SON UTILISATION

Document

说明书

发明名称 0001   0002   0003   0004   0005   0006   0007   0008   0009   0010   0011   0012   0013   0014   0015   0016   0017   0018   0019   0020   0021   0022   0023   0024   0025   0026   0027   0028   0029   0030   0031   0032   0033   0034   0035   0036   0037   0038   0039   0040   0041   0042   0043   0044   0045   0046   0047   0048   0049   0050   0051   0052   0053   0054   0055   0056   0057   0058   0059   0060   0061   0062   0063   0064  

权利要求书

1   2   3   4   5   6   7   8   9   10   11   12   13   14   15  

附图

1   2   3   4   5   6   7   8   9   10  

说明书

发明名称 : 一种多肽RDP1及其提纯方法与应用

技术领域

[0001]
本发明属于生物医药领域,具体涉及一种多肽RDP1及其提纯方法与应用。

背景技术

[0002]
根据2017年《中国痛风现状报告白皮书》,中国痛风患者已经超过8000万人,痛风已成为中国仅次于糖尿病的第二大代谢类疾病。痛风因血液中尿酸堆积并结晶在关节或软组织中而发病,其疾病前期症状为高尿酸血症。高尿酸血症一般是由尿酸产生过多或排出过少引起,而黄嘌呤作为尿酸产生中的关键酶,被最常用作抗高尿酸血症的药物靶点。抗高尿酸血症是非急性期抗痛风的主要目标,但临床上现有的抗高尿酸血症类药物都存在一定缺陷,包括活性低、制作成本高、副作用大且难以逆转等。因此,急需探索或研发出不良反应少、经济实用的新型抗高尿酸血症药物。
[0003]
已报道的具有抗高尿酸血症活性的物质主要是小分子化合物,但大部分难以储存和生产。近几十年来,许多研究表明:含有5~10个氨基酸的短肽更易于吸收,而且往往更易于检测出特异的活性。研究人员发现:短肽通常具有高活性、高稳定性和特异性,而且也更经济且容易大量生产;因此,短肽具有广泛的应用价值,这引起了全世界研究人员的高度关注。一些多肽药物已在临床上被广泛使用,如艾塞那肽,胰岛素等。同时,还发现了大量具有其他活性的生物肽,如抗菌肽、镇痛肽等,但具有抗高尿酸血症活性的多肽研究和发现仍处于起步阶段。
[0004]
为此,我们研发一种抗高尿酸血症的活性多肽,它可以有效缓解高尿酸 血症,且具有较高的稳定性及肾保护活性。
[0005]
发明内容
[0006]
本发明的第一目的在于提供一种多肽RDP1,所述多肽RDP1包含的氨基酸序列如SEQ No.1所示。
[0007]
本发明的第二目的在于提供一种所述多肽RDP1的提纯方法,其特征在于,包括以下步骤:
[0008]
(1)大米用去离子水浸泡过夜,取过滤后上清液真空冷冻干燥,获得大米提取物冻干粉,-80℃保存备用;
[0009]
(2)将所述大米提取物冻干粉溶解于去离子水中,使用Sephadex G50柱子层析分离;
[0010]
(3)将步骤(2)的分离产物进行第一次高效液相色谱反相层析,并收集活性组分;
[0011]
(4)将所述活性组分进行第二次高效液相色谱反相层析,得到纯化的多肽RDP1。
[0012]
本发明的第三目的在于提供一种所述多肽RDP1抗高尿酸血症的应用,包括口服应用。
[0013]
本发明的第四目的在于提供一种含有所述多肽RDP1的药物。
[0014]
本发明的第五目的在于提供一种所述多肽RDP1在抗高尿酸血症的药物中的应用。

附图说明

[0015]
图1为本发明抗高尿酸血症活性多肽RDP1的Sephadex G50分子筛图;图中,箭头所指为RDP1吸收峰。
[0016]
图2为本发明抗高尿酸血症活性多肽RDP1的HPLC反相C18柱层析图。
[0017]
图中,箭头所指为RDP1吸收峰。
[0018]
图3为本发明抗高尿酸血症活性多肽RDP1的第2次HPLC反相C18柱层析图。
[0019]
图中,箭头所指为RDP1吸收峰。
[0020]
图4为本发明抗高尿酸血症活性多肽RDP1的质谱图。
[0021]
图5为本发明抗高尿酸血症活性多肽RDP1的一级结构图。
[0022]
图6为本发明抗高尿酸血症活性多肽RDP1的降尿酸结果图。图中,***代表P<0.001(t检验)。
[0023]
图7为本发明抗高尿酸血症活性多肽RDP1的降肌酐结果图。图中,*代表P<0.05,**代表P<0.01,***代表P<0.001(t检验)。
[0024]
图8为本发明抗高尿酸血症活性多肽RDP1的HE染色结果图。
[0025]
图9为本发明抗高尿酸血症活性多肽RDP1体外的抑制黄嘌呤氧化酶活性结果。图中,**代表P<0.01,***代表P<0.001(t检验)。
[0026]
图10为本发明抗高尿酸血症活性多肽RDP1给药后大鼠血清的体内的抑制黄嘌呤氧化酶活性结果图。图中,*代表P<0.05,**代表P<0.01(t检验)。

具体实施方式

[0027]
下面结合附图对本发明作进一步的说明,但不以任何方式对本发明加以限制,基于本发明教导所做的任何变换或替换,均属于本发明的保护范围。
[0028]
本发明所述多肽RDP1,来源于大米提取物,所述多肽RDP1包含的氨基酸序列如SEQ No.1所示。
[0029]
本发明还提供一种从大米提取物中提纯所述多肽RDP1的提纯方法,包括以下步骤:
[0030]
(1)大米用去离子水浸泡过夜,取过滤后上清液真空冷冻干燥,获得大米提取物冻干粉,-80℃保存备用;
[0031]
(2)将所述大米提取物冻干粉溶解于去离子水中,使用Sephadex G50柱子层析分离,具体为将所述大米提取物冻干粉,溶解于去离子水中,取1mL上预先用20mmol/L Tris-HCl缓冲液(pH=7.8,含0.1mol/LNaCl)平衡24h的Sephadex G50柱子(长度40cm,内径宽度1.5cm),用同样的缓冲液进行洗脱,流速为3mL/10min,每10min收集1次。
[0032]
(3)将步骤(2)得到的分离产物预先用超纯水(含0.1%的三氟乙酸)平衡好的Hypersil ODS2 5mm柱子,实验仪器为Waters 1525高压液相系统,在流速为1mL/min的条件下,用乙腈(含0.1%的三氟乙酸)在线性梯度(0-100%,100min)条件下进行洗脱,并收集活性产物,监测波长为220nm;
[0033]
(4)将步骤(3)的活性产物真空冷冻干燥后再溶于去离子水,然后重复步骤(3)过程,得到纯化的RDP1多肽。
[0034]
除了从大米提取物中获得外,本发明所述的多肽RDP1还可通过人工合成的方法得到。目前生物活性肽的制备方法有很多种,包括保护化学合成法、水解法、重组DNA技术等,这些方法均适用于制备本发明所述的多肽RDP1。
[0035]
本发明所述多肽RDP1结构简单,具有抗高尿酸血症的活性,纯化得到的活性多肽RDP1在氧嗪酸钾诱发的高尿酸血症动物模型实验中显示了较强的抗高尿酸血症活性,揭示本发明所述的多肽RDP1在抗高尿酸血症方面具有巨大的应用前景。
[0036]
本发明的所述多肽RDP1的应用可以为口服应用,所述的口服应用为每 日给与的多肽RDP1剂量范围为每千克体重约10微克到1000微克。优选每千克体重约10微克或每千克体重约100微克。
[0037]
下面将结合具体实施例,对本发明进行进一步的说明。
[0038]
实施例1:抗高尿酸血症活性多肽RDP1分离纯化和鉴定
[0039]
1、分离纯化
[0040]
大米用去离子水浸泡过夜,过滤后上清液真空冷冻干燥,-80°保存备用。将获得大米提取物冻干粉,溶解于去离子水中,取1mL上预先用20mmol/L Tris-HCl缓冲液(pH7.8,含0.1mol/L NaCl)平衡24h的Sephadex G50(GE Healthcare,超细)柱子(长度40cm,内径宽度1.5cm),用同样的缓冲液进行洗脱,流速为3mL/10min,每10min收集1次。检测每管吸光度,检测波长为280nm,将图1箭头所指吸收峰下样品合并。
[0041]
将所得样品上样于预先用超纯水(含0.1%的三氟乙酸)平衡好的Hypersil ODS25mm柱子(伊利特产品,尺寸为4.6mm×300mm),实验仪器为Waters1525高压液相系统,在流速为1mL/min的条件下,用乙腈(含0.1%的三氟乙酸)在线性梯度(0~100%,100min)条件下进行洗脱,监测波长为220nm,所得的分离纯化图谱如图2所示:箭头所指峰为RDP1。收集图2箭头所指峰,真空冷冻干燥后溶于去离子水,然后重复第1次HPLC过程,所得的分离纯化图谱如图3所示,箭头所指为纯化的RDP1所在峰。
[0042]
2、氨基酸序列的测定
[0043]
用质谱法测定样品的分子量,结果为785.91Da(图4)。将1μL样品与1μLα-氰基-4-羟基辛酸(5mg/mL,溶于50%ACN,0.1%TFA)混合,并在样品板上进行点状结晶。用AutoFlex Speed MALDI TOF/TOF质谱仪对正结晶样品进行分析。
[0044]
为了确定氨基酸序列,将样品溶于25mmol/LNH 4HCO 3中,在37℃下用二硫代苏糖醇还原1h,用碘乙酰胺阻断30min,然后将样品与α-氰基-4-羟基辛酸混合,并在同一设备上进行串联质谱分析。
[0045]
结果如图5所示:抗高尿酸血症活性多肽RDP1的氨基酸序列为AAAAGAKAR,同SEQ No.1所示。
[0046]
实施例2:多肽RDP1的抗高尿酸血症活性测定
[0047]
(1)血清尿酸和肌酐含量测定
[0048]
利用氧嗪酸钾诱导的高尿酸血症动物模型检测多肽RDP1的抗高尿酸血症活性。选体重100~150g的SPF级SD大白鼠进行实验,将大鼠随机分成6组,每组5只,这6组分别为空白对照、阴性对照、阳性对照以及3个RDP1处理组(10、100、1000μg/kg)。空白对照每天灌胃给等量生理盐水,其余各组每天灌胃给氧嗪酸钾(450mg/kg)和腺嘌呤(100mg/kg)1h后,再分别灌胃给药:阴性对照组给等量生理盐水,阳性对照组给10mg/kg别嘌呤醇,3个RDP1处理组分别给10、100、1000μg/kg RDP1,一共给药7天。第7天给药(生理盐水、别嘌呤醇、RDP1)结束1h后,给大鼠腹腔注射1%的戊巴比妥钠(0.3mL/100g)麻醉大鼠,然后于大鼠股动脉处取全血。将全血于室温下,6000r/min,离心5min后以获取血清。将部分大鼠血清使用试剂盒进行尿酸、肌酐含量检测,结果如图6、7所示:阳性对照组和RDP1处理各组的血清尿酸和肌酐含量明显低于阴性对照组。其余血清用于体内黄嘌呤氧化酶抑制活性检测。
[0049]
取血后,取大鼠肾脏固定于4%甲醛中24~48h,组织通过梯度乙醇脱水,二甲苯透明。使用石蜡包埋法,切片5μm,进行HE染色。结果通过正置显微镜放大200倍观察。多肽RDP1的肾保护活性如图8所示:阴性对照组(模型组) 大鼠肾脏与空白组相比可以看到刷状缘消失,肾小管萎缩;而阳性对照组和RDP1组与阴性对照组比可以看到肾脏病理改变得到了明显的缓解。
[0050]
(2)黄嘌呤氧化酶抑制率测定
[0051]
试验分为阴性对照、阳性对照和3个RDP1处理组,分别进行体内外黄嘌呤氧化酶活性抑制测定;同时配制50mmol/LTris-HCl pH 8的缓冲液,备用。
[0052]
①体外实验:
[0053]
阴性对照:128μL 2mmol/L黄嘌呤溶液+16μL 0.52mU/mL黄嘌呤氧化酶溶液+928μL缓冲液+32μL缓冲液。
[0054]
阳性对照:128μL 2mmol/L黄嘌呤溶液+16μL 0.52mU/mL黄嘌呤氧化酶溶液+928μL缓冲液+32μL 1mg/mL别嘌呤醇溶液。
[0055]
3个RDP1处理组:128μL 2mmol/L黄嘌呤溶液+16μL 0.52mU/mL黄嘌呤氧化酶溶液+928μL缓冲液+32μL 1/10/1000μg/kg RDP1溶液。
[0056]
②体内实验:
[0057]
阴性对照:128μL 2mmol/L黄嘌呤溶液+16μL 0.52mU/mL黄嘌呤氧化酶溶液+928μL缓冲液+32μL阴性对照组大鼠血清。
[0058]
阳性对照:128μL 2mmol/L黄嘌呤溶液+16μL 0.52mU/mL黄嘌呤氧化酶溶液+928μL缓冲液+32μL 1mg/mL阳性对照组大鼠血清。
[0059]
体内3个RDP1处理组:32μL 1/10/1000μg/kg大鼠血清++928μL缓冲液。
[0060]
将各试验组37℃孵育15min,加入48μL 1mol/L HCL终止反应,在292nm处测定吸光度。抑制活性计算公式如下:
[0061]
黄嘌呤氧化酶抑制率(%)=(阴性对照OD 292nm值-阳性对照或者处理组OD 292nm值)/阴性对照OD 292nm值×100%。
[0062]
多肽RDP1体外抑制黄嘌呤氧化酶活性如图9所示:阳性对照的黄嘌呤氧化酶抑制率最高,其次为RDP1各处理组,均明显高于阴性对照。
[0063]
体内抑制黄嘌呤氧化酶活性如图10所示:血清中1000μg/kg RDP1组的黄嘌呤氧化酶抑制率最高,其次为100μg/kg RDP1组、阳性对照组和10μg/kg RDP1组。
[0064]
综上所述,本发明涉及抗高尿酸血症活性多肽RDP1具有结构简单、活性高、给药方式简单等有益特点。

权利要求书

[权利要求 1]
一种抗高尿酸血症活性多肽RDP1,其特征在于,所述多肽RDP1包含的氨基酸序列如SEQ No.1所示。
[权利要求 2]
一种权利要求1所述多肽RDP1的提纯方法,其特征在于,包括以下步骤: (1)大米用去离子水浸泡过夜,取过滤后上清液真空冷冻干燥,获得大米提取物冻干粉,-80℃保存备用; (2) (2)将所述大米提取物冻干粉溶解于去离子水中,使用Sephadex G50柱子层析分离; (3) (3)将步骤(2)的分离产物进行第一次高效液相色谱反相层析,并收集活性组分; (4) (4)将所述活性组分进行第二次高效液相色谱反相层析,得到纯化的多肽RDP1。
[权利要求 3]
根据权利要求2所述多肽RDP1的提纯方法,其特征在于,所述步骤(2)具体为将所述大米提取物冻干粉,溶解于去离子水中,取1mL上预先用20mmol/L Tris-HCl缓冲液平衡24h的Sephadex G50柱子,用同样的缓冲液进行洗脱,流速为3mL/10min,每10min收集1次。
[权利要求 4]
根据权利要求3所述多肽RDP1的提纯方法,其特征在于,所述Tris-HCl缓冲液pH 7.8,含0.1mol/L NaCl。
[权利要求 5]
根据权利要求3所述多肽RDP1的提纯方法,其特征在于,所述Sephadex G50柱子长40cm,内径1.5cm。
[权利要求 6]
根据权利要求2所述多肽RDP1的提纯方法,其特征在于,所述步骤(3)具体为将步骤(2)得到的分离产物预先用含0.1%三氟乙酸的超纯水平衡后的Hypersil ODS2 5mm柱子,实验仪器为Waters 1525高压液 相系统,在流速为1mL/min的条件下,用含0.1%三氟乙酸的乙腈在线性梯度条件下进行洗脱,并收集活性产物,监测波长为220nm;所述步骤(4)具体为将步骤(3)的活性产物真空冷冻干燥后再溶于去离子水,然后重复步骤(3),得到纯化的RDP1多肽。
[权利要求 7]
根据权利要求6所述所述多肽RDP1的提纯方法,其特征在于,所述线性梯度为0~100%,100min。
[权利要求 8]
一种权利要求1所述多肽RDP1在抗高尿酸血症的应用。
[权利要求 9]
一种含有权利要求1所述多肽RDP1的抗高尿酸血症组合物。
[权利要求 10]
如权利要求8所述多肽RDP1在抗高尿酸血症的应用,其特征在于,所述应用为口服应用。
[权利要求 11]
如权利要求10所述多肽RDP1在抗高尿酸血症的应用,其特征在于,所述的口服应用为每日给与的多肽RDP1剂量范围为每千克体重约10微克到1000微克。
[权利要求 12]
如权利要求11所述多肽RDP1在抗高尿酸血症的应用,其特征在于,所述的口服应用为每日给与的多肽RDP1剂量为每千克体重约10微克。
[权利要求 13]
如权利要求11所述多肽RDP1在抗高尿酸血症的应用,其特征在于,所述的口服应用为每日给与的多肽RDP1剂量为每千克体重约100微克。
[权利要求 14]
如权利要求11所述多肽RDP1在抗高尿酸血症的应用,其特征在于,所述的口服应用为每日给与的多肽RDP1剂量为每千克体重约1000微克。
[权利要求 15]
一种权利要求1所述多肽RDP1在抗高尿酸血症的药物中的应用。

附图

[ 图 1]  
[ 图 2]  
[ 图 3]  
[ 图 4]  
[ 图 5]  
[ 图 6]  
[ 图 7]  
[ 图 8]  
[ 图 9]  
[ 图 10]